Kaedah membuat slaid mikroskop
Terdapat tiga kaedah membuat slaid mikroskop:
1. Kaedah calitan
Kaedah smear adalah kaedah penyediaan di mana bahan dihamparkan secara rata pada slaid.
Bahan smear termasuk organisma unisel, alga kecil, darah, kultur bakteria, tisu longgar tumbuhan dan haiwan, sarang sperma, anter, dll.
Perhatian harus diberikan apabila mencalit:
(1) Slaid mestilah bersih.
(2) Gelongsor hendaklah dipegang rata.
3) Salutan mestilah seragam. Sapukan titisan cecair salutan di sebelah kanan tengah gelongsor dan ratakan dengan baik dengan bilah pisau pemotong atau pencungkil gigi, dsb.
4) Salutan hendaklah nipis. Gunakan slaid lain sebagai penolak, tolak perlahan-lahan dari kanan ke kiri di sepanjang permukaan slaid dengan titisan larutan aplikasi (sudut antara dua slaid hendaklah 30 darjah hingga 45 darjah ), dan sapukan lapisan nipis yang seragam.
5) Penetapan. Jika penetapan diperlukan, gunakan fiksatif kimia atau penetapan pengeringan (bakteria).
6) Mewarna. Gunakan metilena biru untuk bakteria dan noda Rachel untuk darah. Penyelesaian pewarnaan harus meliputi seluruh permukaan bersalut.
7) Bilas. Serap pada kertas penyerap atau bakar kering.
8) Tutup filem itu. Untuk penyimpanan jangka panjang, gunakan filem pokok Kanada.
2. Kaedah Menekan Filem
Kaedah filem tekanan adalah bahan biologi yang diletakkan di antara slaid dan penutup lembaran, menggunakan tekanan tertentu, sel-sel tisu akan ditekan selain kaedah penyediaan.
(1) mengambil bahan. Pemerhatian pembahagian sel, pembahagian sel harus dipilih riang, sel-sel tisu segar sebagai bahan. Seperti hujung akar, tisu meristematik hujung batang, sel sumsum tulang, anter (sel ibu debunga). Sarang sperma (spermatogonia) dan sebagainya.
(2) Penetapan. Penetapan bahan boleh ditentukan mengikut keperluan, serta-merta selepas mengambil pemerhatian filem tekanan bahan, tidak boleh membuat rawatan tetap berasingan (dan pewarnaan segerak); mengambil bahan tidak serta-merta selepas pemeriksaan, bahan boleh diperbaiki dengan fiksatif (biasanya dengan fiksatif alkohol asetat). Tetap 2 ~ 24 jam (bergantung kepada bahan) selepas mencuci dengan 95% etanol, dipelihara dalam 70% etanol, siap sedia.
(3) Pemisahan. Sel-sel tidak mudah untuk menyebarkan bahan dengan penyelesaian pemisahan hidrolisis (seperti 1N HCl atau asid hidroklorik larutan alkohol) rawatan, rawatan am 6 ~ 20min, selepas penceraian dan bilas dengan air sebelum mengotorkan.
(4) Mewarna. Terdapat pelbagai jenis kotoran. Pemerhatian kromosom biasanya digunakan untuk mengotorkan dengan larutan pewarna magenta asetat.
(5) Menekan filem. Letakkan bahan pada slaid, tambah setitik air atau larutan pewarna, tutup penutup penutup dan tekan perlahan-lahan slaid dengan ibu jari anda.
(6) Pemerhatian. Selepas menekan filem, ia boleh diperhatikan di bawah mikroskop.
