Kaedah penyediaan slaid mikroskop
1. Kaedah smear
Kaedah Smearing adalah kaedah penyediaan slaid dengan bahan salutan seragam ke atasnya.
Bahan smear termasuk organisma sel -, alga kecil, darah, media kultur bakteria, tisu longgar haiwan dan tumbuhan, testis, anthers, dll.
Apabila mencium, perhatian harus dibayar kepada:
(1) Slaid kaca mesti dibersihkan.
(2) Slaid kaca harus rata.
(3) Salutan mestilah seragam. Sapukan titisan ke kanan tengah slaid kaca dan sebarkannya sama rata dengan pisau atau tusuk gigi.
(4) Lapisan harus nipis. Menggunakan slaid kaca lain sebagai slaid, perlahan -lahan menolak dari kanan ke kiri sepanjang permukaan slaid kaca dengan cecair yang digunakan (sudut antara kedua -dua slaid harus 30 darjah hingga 45 darjah), dan memohon lapisan nipis seragam.
(5) Tetap. Sekiranya penetapan diperlukan, kaedah pengeringan atau kaedah pengeringan kimia (bakteria) boleh digunakan untuk penetapan.
(6) Pewarnaan. Bakteria menggunakan metilena biru, dan darah menggunakan penyelesaian pewarnaan Wright. Penyelesaian pewarnaan harus meliputi seluruh permukaan salutan.
(7) Bilas. Gunakan kertas penyerap untuk menyerap atau kering.
(8) Tutup filem. Pemeliharaan jangka panjang menggunakan filem pokok Kanada.
2. Kaedah menekan tablet
Kaedah mampatan adalah kaedah mengiris bahan biologi dengan meletakkannya di antara slaid kaca dan penutup, menggunakan tekanan tertentu untuk menyebarkan sel -sel tisu.
Proses umum kaedah menekan tablet:
(1) Pemilihan bahan. Untuk memerhatikan pembahagian sel, sel -sel tisu segar dengan pembahagian sel yang kuat harus dipilih sebagai bahan. Seperti hujung akar, ujung batang meristem, sel sumsum tulang, anthers (sel ibu debunga). Sarang sperma (spermatosit), dll.
(2) Tetap. Penetapan bahan boleh ditentukan mengikut keperluan, dan sampel harus segera dimampatkan dan diperhatikan. Ia tidak perlu melakukan rawatan penetapan berasingan (segerak dengan pewarnaan); Jika bahan tidak diperiksa sebaik sahaja selepas pensampelan, ia boleh diperbaiki dengan fixative (biasanya asid asid asid fixative). Selepas menetapkan selama 2-24 jam (bergantung kepada bahan), bilas dengan 95% etanol dan simpan dalam 70% etanol untuk kegunaan kemudian.
(3) Pemisahan. Bahan yang tidak mudah disebarkan oleh sel harus dirawat dengan larutan pemisahan hidrolisis (seperti 1N HCl atau air mani asid hidroklorik) selama 6-20 minit. Selepas pemisahan, mereka harus dibilas dengan air sebelum pewarnaan.
(4) Pewarnaan. Terdapat banyak jenis pewarna. Kromosom biasanya berwarna dengan larutan pewarnaan asid asetik.
(5) Tekan tablet. Letakkan bahan pada slaid kaca, tambahkan setetes air atau larutan pewarna, tutup slaid dengan penutup, dan perlahan -lahan tekan dengan ibu jari anda.
(6) Perhatikan. Selepas mampatan, ia dapat dilihat di bawah mikroskop.
