Keperluan untuk penyediaan slaid mikroskop pendarfluor
(1) Slaid kaca
Ketebalan slaid hendaklah antara 0.8 dan 1.2mm. Jika slaid terlalu tebal, di satu pihak, ia akan menyerap lebih banyak cahaya, dan sebaliknya, ia tidak akan membenarkan cahaya pengujaan berkumpul pada spesimen. Gelongsor kaca mestilah licin, ketebalan seragam, dan tidak mempunyai pendarfluor spontan yang jelas. Kadangkala slaid kaca kuarza diperlukan.
(2) Penutup kaca slaid
Ketebalan kaca penutup adalah kira-kira 0.17mm dan ia licin. Untuk meningkatkan cahaya pengujaan, kaca penutup gangguan juga boleh digunakan. Ini ialah kaca penutup yang direka khas dengan beberapa lapisan bahan (seperti magnesium fluorida) yang mempunyai kesan gangguan yang berbeza pada cahaya dengan panjang gelombang yang berbeza. Ia boleh membenarkan pendarfluor lulus dengan lancar, manakala cahaya pengujaan pantulan boleh mengujakan spesimen.
(3) Spesimen
Potongan tisu atau spesimen lain tidak boleh terlalu tebal. Jika terlalu tebal, kebanyakan cahaya pengujaan digunakan di bahagian bawah spesimen, manakala bahagian atas yang diperhatikan secara langsung oleh kanta objektif tidak teruja sepenuhnya. Di samping itu, pertindihan sel atau penutup kekotoran boleh menjejaskan pertimbangan.
(4) Ejen pengedap
Gliserin biasanya digunakan sebagai agen pelekap, yang mesti tidak mempunyai pendarfluor spontan, tidak berwarna dan telus. Kecerahan pendarfluor agak terang pada pH 8.5-9.5 dan tidak mudah pudar dengan cepat. Oleh itu, campuran yang sama bagi gliserol dan 0.5mol/L penampan karbonat dengan pH 9.0-9.5 biasanya digunakan sebagai agen pengedap.
(5) Minyak cermin
Apabila menggunakan mikroskop pendarfluor medan gelap dan mikroskop minyak untuk memerhati spesimen, minyak cermin mesti digunakan. Minyak cermin bukan pendarfluor khas boleh digunakan, atau gliserol boleh digunakan sebagai pengganti. Parafin cecair juga boleh digunakan, tetapi indeks biasannya rendah dan mempunyai sedikit kesan pada kualiti imej.
